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	<title>Rezepte - Revision history</title>
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	<updated>2026-04-17T19:24:08Z</updated>
	<subtitle>Revision history for this page on the wiki</subtitle>
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		<id>https://wiki.esonto.de/index.php?title=Rezepte&amp;diff=61&amp;oldid=prev</id>
		<title>ESO wikiadmin: Created page with &quot;= Zusammenfassung aller Rezepte =  == Antibiotika-Lösungen ==  === Ampicillin (100 mg/ml) === &#039;&#039;&#039;Menge:&#039;&#039;&#039; 20 ml  * 2.0 g Ampicillin * Dest. H2O  &#039;&#039;Zusatzinfo:&#039;&#039; In Wasser lösen, Endvolumen 20 ml, steril filtrieren (0,2 µm), aliquotieren und bei -20 °C lagern.  === Chloramphenicol (30 mg/ml) === &#039;&#039;&#039;Menge:&#039;&#039;&#039; 20 ml  * 0.6 g Chloramphenicol * 96% EtOH  &#039;&#039;Zusatzinfo:&#039;&#039; In Ethanol lösen, steril filtrieren, aliquotieren und bei -20 °C lagern.  === Kanamycin (50 mg/ml) =...&quot;</title>
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		<updated>2025-02-15T15:07:48Z</updated>

		<summary type="html">&lt;p&gt;Created page with &amp;quot;= Zusammenfassung aller Rezepte =  == Antibiotika-Lösungen ==  === Ampicillin (100 mg/ml) === &amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Menge:&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; 20 ml  * 2.0 g Ampicillin * Dest. H2O  &amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; In Wasser lösen, Endvolumen 20 ml, steril filtrieren (0,2 µm), aliquotieren und bei -20 °C lagern.  === Chloramphenicol (30 mg/ml) === &amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Menge:&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; 20 ml  * 0.6 g Chloramphenicol * 96% EtOH  &amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; In Ethanol lösen, steril filtrieren, aliquotieren und bei -20 °C lagern.  === Kanamycin (50 mg/ml) =...&amp;quot;&lt;/p&gt;
&lt;p&gt;&lt;b&gt;New page&lt;/b&gt;&lt;/p&gt;&lt;div&gt;= Zusammenfassung aller Rezepte =&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Antibiotika-Lösungen ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Ampicillin (100 mg/ml) ===&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Menge:&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; 20 ml&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 2.0 g Ampicillin&lt;br /&gt;
* Dest. H2O&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; In Wasser lösen, Endvolumen 20 ml, steril filtrieren (0,2 µm), aliquotieren und bei -20 °C lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Chloramphenicol (30 mg/ml) ===&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Menge:&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; 20 ml&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 0.6 g Chloramphenicol&lt;br /&gt;
* 96% EtOH&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; In Ethanol lösen, steril filtrieren, aliquotieren und bei -20 °C lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Kanamycin (50 mg/ml) ===&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Menge:&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; 20 ml&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 1.0 g Kanamycin&lt;br /&gt;
* MQ H2O&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; In Wasser lösen, steril filtrieren, aliquotieren und bei -20 °C lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Tetracyclin (12,5 mg/ml) ===&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Menge:&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; 5 ml&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 62,5 mg Tetracyclin&lt;br /&gt;
* 96% EtOH&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; In Ethanol lösen, steril filtrieren, aliquotieren und bei -20 °C lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Ciprofloxacin (20 mg/ml) ===&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Menge:&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; 20 ml&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 0.4 g Ciprofloxacin HCl&lt;br /&gt;
* MQ H2O&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; In Wasser lösen, steril filtrieren, aliquotieren und bei -20 °C lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Fungizone (100x) ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 20 ml Fungizone&lt;br /&gt;
* 20 ml MQ H2O&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; Aliquotieren, in Folie einwickeln und im Gefrierschrank lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Geneticin (G418, 50 mg/ml) ===&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Menge:&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; 10 ml&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 500 mg Geneticin&lt;br /&gt;
* MQ H2O&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; In Wasser lösen, steril filtrieren, aliquotieren und bei -20 °C lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Hygromycin B ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 24,33 ml 1X PBS&lt;br /&gt;
* 1 ml Hygromycin B&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; Steril filtrieren, aliquotieren und lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Puromycin (5 mg/ml) ===&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Menge:&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; 5 ml&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 25 mg Puromycin&lt;br /&gt;
* MQ H2O&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; In Wasser lösen, steril filtrieren, aliquotieren und bei -20 °C lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== DNA-Arbeiten ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== 0.7% Agarose-Gel ===&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Menge:&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; 300 ml&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 2,1 g Agarose&lt;br /&gt;
* 300 ml 1X TAE Buffer&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; Bei Raumtemperatur lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== 1.4% Agarose-Gel ===&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039;Menge:&amp;#039;&amp;#039;&amp;#039; 300 ml&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 4,2 g Agarose&lt;br /&gt;
* 300 ml 1X TAE Buffer&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; Bei Raumtemperatur lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== DNA Ladder ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* Gene Ruler 1kb DNA ladder SMO311 Fermentas&lt;br /&gt;
* 100 µl 1 kb Ladder, 100 µl 6x Loading Dye, 400 µl dest. H2O&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; Aliquotieren und bei -20 °C lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== dNTP’s ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 50 µl 100 mM je dATP, dGTP, dCTP, dTTP + 50 µl dest. H2O + 1 µl 1 M Tris pH 8&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; Aliquotieren und bei -20 °C lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Protein-Arbeiten ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== GST Buffer ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 80 ml 1.0 M Hepes (20mM), 120 ml 5M NaCl (150mM), 8 ml 0.5 M EDTA (1mM), 400 ml 100% Glycerol (10%), Dest. H2O&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; Endvolumen 4L, über Nacht dialysieren.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== SDS-PAGE Trenngel ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 7% bis 15% Acrylamid/Bis-Lösung, Wasser, 1.5 M Tris pH 8.8, 20% SDS, 10% APS, TEMED&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; Entgasen, schnell verarbeiten.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== SDS-PAGE Sammelgel ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 5% Acrylamid/Bis, Wasser, 0.5 M Tris pH 6.8, 20% SDS, 10% APS, TEMED&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Protein-Marker ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* LMW Marker: Lysozym, Trysin-Inhibitor, Anhydrase, Peroxidase, BSA, Lipoxidase&lt;br /&gt;
* HMW Marker: Peroxidase, BSA, Lipoxidase, β-Galactosidase, Myosin&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; In Triton-Puffer lösen, aliquotieren und bei -20 °C lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Coomassie-Färbung ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 500 ml Methanol, 75 ml Essigsäure, 425 ml H2O, 1 g Coomassie-Blau&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
&amp;#039;&amp;#039;Zusatzinfo:&amp;#039;&amp;#039; Vorsicht beim Umgang, färbt stark.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Western-Buffer ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* Wet-Transfer: Tris, Glycin, Methanol, SDS, H2O&lt;br /&gt;
* Semi-Dry: Anode- und Kathode-Buffer mit Tris und Aminohexansäure&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Mikrobiologie-Medien ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== LB-Medium ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 10 g Tryptone, 5 g Hefeextrakt, 5 g NaCl, pH 7.0, 1L Endvolumen, autoklavieren.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== SOB Medium ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 20 g Tryptone, 5 g Hefe, 0.58 g NaCl, MgSO4, MnCl2, pH 7.0, 1L, autoklavieren.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== TYM Broth ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 20 g Tryptone, 5 g Hefe, 20 ml 5M NaCl, 10 ml 1M MgCl2, pH 7.0, 1L, autoklavieren.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Terrific Broth ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 48 g Tryptone, 96 g Hefeextrakt, 32 ml 50% Glycerol, Endvolumen 4L, autoklavieren.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
== Zellkultur-Reagenzien ==&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Calciumchlorid (2.5 M) ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 184 g CaCl2 x 2H2O, Endvolumen 500 ml, autoklavieren.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== DMEM-Medien ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* DMEM, FBS, Pyruvat, Pen/Strep, steril filtrieren, lagern.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Starvation Media ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* DMEM, FBS (0.5%/0.1%), Pyruvat, Pen/Strep, steril filtrieren.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Migration Media ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* DMEM, BSA, Pyruvat, Pen/Strep, steril filtrieren.&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
=== Gelatine-Lösung ===&lt;br /&gt;
&lt;br /&gt;
* 0.5 g Gelatine, 500 ml PBS, im Wasserbad lösen, filtrieren.&lt;/div&gt;</summary>
		<author><name>ESO wikiadmin</name></author>
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